Flores, Ciencia y Algo Mas...

VISITA GUIADA A ECUAGENERA....

2009-11-29T20:18:00.009-05:00

ETAPA IN VITRO:

Cuando las semillas germinan, son colocadas en frascos con medio de cultivo, estos frascos esteriles, son tapados con algodon esteril y sellados con strech film.

Los frascos con plantas, son almacenados en estanterias colocadas en una area de buena iluminacion.

Cuando alguno de los frascos se contamina, debe ser inmediatamente retirado de las demas.

ETAPA DE COMUNITARIO:

En esta etapa, las plantas son sacadas del frasco y colocadas en bandejas con sustrato.

El Sustrato esta compuesto por Compost, Helecho y Pino. El Helecho y el pino se deja secar antes de mezclarlo con el compost. Cuando el helecho y el pino esta seco se mezcla con el compost y se trilla, luego, se deja remojar por espacio de 24 horas antes de ser utilizado.

Los riegos se realizan 1 vez por semana por espacio de 15 minutos.

La temperatura maxima debe ser de 30ºC.

Se realizan 2 fertilizaciones por semana, via drenchs se aplica nitrato de potasio y nitrato de calcio.

ETAPA INDIVIDUAL:

La etapa individual empieza en cuanto se empiezan a formar bulbos, es la señal de que debemos transplantarlas a una maceta individual.

Se empiezan a aplicar las fumigaciones. Se riegan 1 vez por semana por espacio de 30 minutos. Se empiezan a realizan deshierbas.

ETAPA DE FLORACION:

En esta etapa la fertilizacion es 1 vez por semana y el riego depende de la humedad, este puede ser 1 o 2 veces por semana.

Cuando se establecen bandas de floracion, se colocan otras plantas en la parte baja para aumentar la humedad.

AREAS DE UN LABORATORIO DE CULTIVO IN VITRO

2009-10-27T19:06:00.008-05:00

Se pueden distinguir 3 areas importantes:

CAMARA DE FLUJO LAMINAR

Contenido:

Cabina de Flujo Laminar
Silla

Es llamada así por que contiene en su interior un Cabina de Flujo Laminar; es el área mas estéril del Laboratorio, todo lo que ingrese en esta área debe estar debidamente esterilizado (material de vidrio, agua destilada), y el personal deberá entrar con el equipo necesario, es decir, con guantes, tapones para oídos, forro para pies, Mandil limpio y mascarilla quirúrgica.

Esta área deberá ser limpiada después de realizar cualquier trabajo en su interior, para asegurar su condición aséptica.

Esta zona debe estar completamente aislada de las otras, se debe evitar que entre el polvo o los insectos.

Se puede reemplazar un cabina de flujo laminar, con una caja de vidrio con orificios para que puedan entrar las manos y los materiales necesarios, ademas el aislamiento se lo puede hacer con plastico y cinta metalica, esta forma es lo mas artesanal posible.

Cuando se realiza esta area de forma artesanal, se desinfecta la caja de vidrio con una bomba de permanganato y formol, tiempo en el cual no debe estar nadie en el interior porque puede ser peligroso. Con ayuda de una lampara de tubo fluorescente, se procede a reemplazar el tubo fluorescente por un tubo de luz uv, el mismo q se enciende media hora antes de la siembra, igualmente, no debe haber alguna persona en este tiempo.

AREA DESARROLLO IN VITRO:

Contenido:

Repisas de Vidrio de varios pisos
Lamparas de tubo fluorescente.
Frascos Sembrados.
Termometro

Es el área donde se colocara el explante después de la siembra, y donde además se desarrollara durante todas fases del programa. El explante, será colocado sobre repisas de vidrio, con iluminación artificial.

Las luces deberán encenderse al empezar el día de trabajo y se apagaran al finalizar la jornada de trabajo. La limpieza es esencial, cuando un frasco se contamina en alguna parte del proceso, el mismo es retirado de la repisa y llevado un lugar despejado para ser eliminado.

Las repisas requieren un area esteril como el de la cabina de flujo laminar.

AREA DE TRABAJO:

Contenido:

Balanza analitica
refrigeradora
Autoclave
Lavaplatos
Cocina

Anaqueles de almacenamiento(para frascos, instrumentos, reactivos y papeleria).

Es un área de transito abierto, en este lugar se recibe, procesa y desinfecta todo (sustrato, medio de cultivo, material), para que entre asépticamente a las cámaras.

Consta como la entrada principal y es en la cual se deberá controlar el ingreso a las áreas más estériles del laboratorio.

SIEMBRA PARA UNA CEPA (Trichoderma harzianum)

2009-10-23T13:21:00.009-05:00

DE UN CRIOTUBO A UNA CEPA

Se prepara y desinfecta la camara de flujo laminar, se enciende la cabina de flujo Laminar y el mechero de alcohol; Se atomiza alcohol, sobre el material a utilizar (jeringa, agitador, algodon y el vital del antagonista a sembrar). Con un algodón empapado de alcohol, se limpia la mesa de la cabina de flujo laminar.

Cerca del mechero de alcohol, se abre el criotubo y con un agitador desinfectado se agita el contenido del vital, para que quede homogéneo. Se rocía la aguja de la jeringa con alcohol y se acerca a la flama del mechero, manteniéndolo hasta que llegue al rojo vivo.

Cuando alcanza el rojo vivo, se enfría la aguja en el medio de una caja Petri. Después se introduce la aguja en el criotubo y se siembra de varias formas:

· Se hace un rayado en forma de cuadrado en el medio PDA.

· Se dejan caer unas gotas en el medio PDA.

· Se realizan las dos anteriores juntas.

Cuando se terminan de sembrar todas las cajas Petri, se coloca tape alrededor de cada una, procurando que quede sellada. Luego se corta plástico film y se envuelve la caja Petri, procurando estirarla para que se pegue mejor, después se marca con la fecha de siembra.

DE UNA CEPA A OTRA CEPA (REPLICADO DE CEPAS)

Se rocía alcohol en el sacabocado y se flamea en el mechero de alcohol hasta que llegue al rojo vivo, se la enfría antes de realizar el bocado.

Cerca del mechero de alcohol, se abre caja petri con la cepa y con la ayuda de un sacabocados, se marcan circunferencias de 5 mm de diámetro. Con la ayuda de un agua flameada, se coge un bocado de la cepa y se coloca en el centro de una caja Petri con medio PDA.

DE UN SUSTRATO A UNA CEPA

Se rocía alcohol la aguja de una jeringa y se flamea en el mechero de alcohol hasta que llegue al rojo vivo. Luego se enfría la aguja en el medio de cultivo de una caja Petri, y con la misma aguja se coge un grano del sustrato colmado por el antagonista a sembrar y se coloca en el centro de una caja Petri con medio PDA.

ELABORACION DE MEDIO PDA

2009-09-29T09:59:00.007-05:00

Con una probeta, se mide la cantidad de agua destilada necesaria para el número de cajas Petri que necesitemos y la colocamos en un vaso de precipitación o en un matraz.

RELACION DEL MEDIO DE CULTIVO
MEDIO PDA: 9,75 gr
Agua destilada: 240 ml

Con la ayuda de una Balanza Analítica y una cuchara, se pesa el medio de cultivo, en este caso es PDA (papa-dextrosa-agar), y lo vertimos en el matraz o vaso de precipitación que contenía agua destilada.

Se agita vigorosamente hasta que el PDA se disuelva. Una vez disuelto, se tapa el recipiente con un pedazo de papel aluminio y se ajusta con un pedazo de plástico film alrededor de la boca del envase.

Con la ayuda de un fosforo se enciende la hornilla, con una llama media. En una olla grande se llena hasta los 5 cm. de altura y se introduce en ella una parrilla para hacer el efecto de Baño María.

Se coloca papel periódico en la base de la parrilla y en las paredes de la olla. Cuando el agua llega a punto de ebullición se coloca el PDA, está es envuelta en una franela antes de ser colocadas.

Se tapa y con la ayuda de un cronometro se contabilizan 1 hora y media antes de ser apagada. Después esperamos a que la temperatura baje, esto se lo corrobora con la ayuda de un termómetro.

Cuando la temperatura baja se retira el medio PDA y lo lleva a la cámara de flujo laminar, junto con las cajas Petri esterilizadas. La temperatura del PDA tiene que estar tibia o se solidificara.

Antes utilizar la Cámara de Flujo Laminar, se mantiene encendida la luz UV por 5 minutos.

Con el equipo apropiado (guantes, mandil, forro de pies y mascarilla), se ingresa a la cámara e flujo laminar. Se apaga la luz UV y se retira la tapa que cubre la Cámara de Flujo Laminar y se la enciende.

Se sienta frente a la Cámara de Flujo Laminar y se atomiza alcohol antiséptico sobre un algodón, y con este mismo se procede a limpiar la superficie interna de la Cámara de Flujo Laminar y cada uno de los materiales que se utilizaran. Se enciende el mechero de alcohol. Se abre el paquete de cajas petri y se las distribuye en la mesa de la cabina de flujo laminar, Se destapa el frasco con medio PDA y se dispensa 20 ml por caja petri.

Cuando se terminan de dispensar el PDA en las cajas petri, se retira el recipiente que contenía el PDA y se apaga el mechero.

Se apaga la cabina de flujo laminar, y con las cajas petri en el interior se coloca la tapa de la cabina y se enciende la luz UV por 5min

Cultivo in Vitro de Crisantemo: Desinfecion y Siembra

2009-09-10T14:33:00.018-05:00

1. PREPARACIÓN DE LOS MEDIOS DE CULTIVO
1.1.INICIACION

Se toma un Erlenmeyers, un vaso de precipitación o una olla de acero inoxidable de 1 litro y se lava con agua destilada el interior. Para preparar 1 litro de medio de iniciación, se agregan 200 ml de agua y las soluciones madres en la siguiente proporción adecuada:

MS (Macronutrientes): xxx

ms (Micronutrientes): xxx

inositol: xxx

vitaminas: xxx

quelato de hierro: xxx

hormonas: xxx

azucar: xxx

Gel: xxx

Foto 1. Preparacion del medio del cultivo. der.) agregacion de las soluciones madres. izq.) Virtiendo el Inositol en el medio de cultivo.

Se agita y se enrraza a 990 ml. Con la ayuda de una tira del test de Ph se ajusta el mismo a 5.5 (Se regula el ph con HCL diluido con agua destilada). Se adiciona el gel, se tapa y se lleva a ebullición.

Foto 2. der) inmersion de la tira de test de pH. Izq) verificacion del pH.

Cuando ha hervido, se retira del fuego y y se deja reposar unos 15 minutos. Después se dispensan 20 ml. en frascos con capacidad de 100 ml. Se tapa la boca del frasco con redondeles de papel aluminio.

Foto 3. Proceso de dispensamiento del medio de cultivo en frascos.

1.2. ESTERILIZACION DE LOS MEDIOS DE CULTIVO.

Se colocan los frascos dentro de el autoclave. Se tapa asegurando bien el autoclave y con la ayuda de un fosforo se enciende la hornilla, con una llama media y se lleva al fuego el utoclave.

Cuando la flecha del manómetro indica que se llego a 15 libras de presión, se trata de estabilizarlo ahí durante 5 minutos y luego se lo retira del fuego. Antes de abrir el autoclave, hay que esperar a que el manómetro indique “0”.

Foto 4. der) colocacion de los frascos con medio de cultivo en el autoclave. Izq) Esterilizacion del medio de cultivo en el autoclave.

Cuando la presión ha descendido totalmente, se lleva el autoclave a la cámara de flujo laminar para abrirla

2.MANEJO DEL MATERIAL VEGETAL
2.1. RECOLECCIÓN Y DESINFECCIÓN

Se seleccionan las camas donde se recolectaran los esquejes; estas camas deben tener plantas sanas.

Foto 5. Plantas madres de crisantemo.

En horas de la mañana se cortan esquejes de 15 cm., los que son transportados al laboratorio en un recipiente con una franela encima.

En el laboratorio se los coloca bajo el chorro de agua para evitar el estrés del esqueje. Con la ayuda de una tijera, se cortan las hojas, dejando el esqueje sin hojas, pero con parte de la nervadura que envuelve a la yema

Foto 6. Der) Recepcion de los esquejes de crisantemo en el laboratorio. Cent)Esqueje de crisantemo. Izq) Corte de las hojas.

Con la ayuda de un cedazo, se dejan los esquejes sin hojas a chorro continuo por espacio de 5 minutos.

Se cortan los esquejes muy grandes y se introducen en un recipiente con agua destilada para enjuagarlos.

Foto 7. Esquejes de crisantemos listos paar empezar la desinfeccion.

Se vuelve a colocar agua destilada hasta el nivel que cubra a los esquejes y se agregan 0.2 ml. de phyton. Los dejamos reposar 5 min y luego los lavamos con agua destilada.

Se prepara una solución de 20% hipoclorito de sodio y 80% agua destilada, y se vierte en el recipiente con los esquejes y se tapa la boca del recipiente con una redondéla de aluminio. Se dejan los esquejes en esta solución por 20 minutos y se los lleva a la cabina de flujo laminar.

Foto 8. Esquejes de crisantemo inmersos en una solucion de agua con phyton.

2.2. SIEMBRA INICIAL

Se preparan y esterilizan previamente las cosa que se utilizaran en la cámara de flujo laminar (papel, algodón, bisturí, agua destilada, medios de cultivo).

Se retira la tapa de la cabina de flujo laminar y se enciende la misma. Se limpian los frascos con medio de cultivo para ingresarlos a la cabina (la limpieza es con alcohol antiséptico y algodón esterilizado.

Foto 9. Der) material esterilizado previamente. Izq) atomizacion de alcohol en la mesa de trabajo.

Se limpia la mesa de trabajo de la cabina con alcohol antiséptico y algodón estéril. Se atomiza alcohol sobre el frasco con los esquejes en cloro, los frascos con cisteína y recipientes vacíos, para luego secarlos con algodón esterilizado. Se enciende el mechero de alcohol.

Se flamea el soporte de los instrumentos (tapa de caja petri), el bisturí y la pinza, para luego atomizar alcohol industrial sobre parte de la mesa y flamearla también.

Foto 10. der, cent, izq) Flameacion de las pinzas, caja petri y mesa de trabajo respectivamente.

Transcurrido el tiempo de los esquejes en cloro, se ciernen los mismos y con agua destilada esterilizada se procede a lavarlos varias veces, para retirar todo rastro de cloro. Se vuelven a sumergir los esquejes en agua destilada y se colocan tres gotas de cloruro de mercurio, se agita fuertemente y se escurre el agua, se lava varias veces con agua destilada esterilizada y se escurre.

Foto 11. der y Cent) lavado de los esquejas en la cabina de flujo laminar. Izq.) adicion del cloruro de mercurio.

Se limpia la mesa de trabajo con un algodón esterilizado y alcohol industrial. Se extiende un papel esterilizado en la mesa de trabajo y se colocan sobre este los explantes.

Foto 12. Manejo de los esquejes antes del corte a explante.

Con la ayuda de una pinza, se sujeta el esqueje para que con un bisturí se pueda realizar el corte del mismo.

Foto 13. Der) esqueje antes del corte. izq) Corte del explante. abaj) explante o inoculo

Una vez cortados, con la ayuda de una pinza se colocan los explantes en los frascos con agua con cisteína, hasta que se termine de preparar todos los explantes.

Se retira el papel usado y se limpia la mesa con alcohol y algodón esterilizado, antes de extender otro papel limpio.

foto 14. Der) Explantes antes de la inmersion en cisteina. izq) Limpieza de la mesa de trabajo. abaj) Explantes inmersos en cisteina.

Cuando al fin se ha terminado de realizar todos los cortes, se acercan los frascos con medio de cultivo. Se extiende un papel esterilizado y con ayuda de una pinza se sacan los explantes inmersos en cisteína para colocarlos sobre el papel. Se abre suavemente la tapa del frasco con medio esterilizado. Se flamea la pinza y se deja enfriar un poco.

Foto 15. Proceso de siembra de los explantes.

Con la pinza se coge el explante y se lo deposita en el medio, este no debe quedar totalmente sumergido en el medio. Se tapa nuevamente el frasco y se ajusta hasta terminar de sembrar todos.

Foto 16. arrib) siembra de explante. der e izq) Explante sembrado de forma adecuada y acostado respectivamente.

Cuando se termina de sembrar todos los explantes, se retiran de la cabina de flujo laminar y se apaga la misma, luego se envuelve en plástico strech film cada uno de los frascos. Paar finalizar se llevan los frascos a un area esteril y sin luz por 8 dias, despues de esto se retiran los contaminados y se lleva el resto a estanterias con tubos de luz fluorescente.

Foto 17. Sellado de los frascos sembrados.

LA FUMIGACION Y LOS FUMIGADORES

2009-08-05T14:36:00.021-05:00

La aplicación se realiza dependiendo de la plaga que se valla a atacar y con la debida protección.

1. Equipo de Trabajo

1.1.El preparador

El preparador o bomberos, es el encargado de realizar las mezclas de los productos químicos, evitar que las mangueras se atasquen con algo, ver el correcto funcionamiento de las lanzas y dar las indicaciones a los fumigadores, para aplicar correctamente el producto y anotar al final de la fumigación lo que se ha aplicado en cada bloque.

Al igual que los fumigadores, debe tener la debida protección al momento de aplicar productos químicos.

Foto 1. El preparador o bombero realizando su trabajo.

1.2.Los fumigadores

Los Fumigadores, son las personas en aplicar un producto al cultivo, ellos deben contar con mas proteccion, puesto que estos debido a la aplicacion estan "bañados en quimicos".

Foto 2. Los fumigadores

2. La fumigación

2.1.Preparativos para fumigar

2.1.1. Equipo de protección

Para esta labor, es necesario contar con el equipo de proteccion adecuado. En los fumigadores el equipo es:

Overol
Pantalon y Chaleco plastico
Botas de caucho
Protectores de mangas y Guantes plasticos
Mascarillas de 3 salidas y Mascara para la cabeza
Manguera y prota manguera
Lanza de Fumigacion C35 con dos salidas
Delantal plastico

Foto 3. Der.) fumigador con el equipo protector (vista frontal). Izq.) Fumigdor con el equipo protector (vista posterior).

Foto 4. Arrib.) Lanza de fumigacion. Abaj.) Detalle de las boquillas de la lanza; consta la boquilla, el filtro, las salidas y el anillo que ajusta al final

El equipo de protección para el preparador es:

Overol
Botas de caucho
Mascarilla
Guantes plásticos gruesos
Balde plástico
Probetas
Cintas de pH
Mandil plástico
Bomba trifásica de 340 libras de presión

2.1.2. Preparación del producto

Foto 5. Der.) productos que se van a aplicar. Izq.) Tanque con agua.

Antes de fumigar se prepara el producto, para esto, se necesita un tanque plástico con agua en los litros que se programaron con anterioridad.

Foto 6. Der.) tarjeta de indicaciones hecho en base a la programación. Izq.) aplicación de un producto.

En base a la tarjeta, se realiza el siguiente procedimiento:

Foto 7. Der.)Tanque con producto, introduciendo la tira para medir el pH. Izq) Medicion de pH.

Se mide en la probeta la cantida de producto o productos necesarios,
Se mezcla con la ayuda de un palo,
Se mide el pH de la mezcla,
Si el pH es bajo que, se adiciona acido cirico y se vuelve a medir,
Se colocan las mangueras de la bomba
Se conecta la manguera

Foto 8.colocacion de las mangeras en el tanque

2.1.3. Formas de Aplicación Según la plaga o enfermedad

2.1.3.1.Oidium y velloso

Para oidium y velloso se aplica el producto de la misma manera. Hay dos formas de aplicar, una es el pase simple y otro el paso doble.

Foto 9. Entrada y salida de los fumigadores en el paso simple

El paso simple es para preventivo o con un ataque leve y hay que tomar en cuenta lo siguientes:

La lanza tiene un movimiento de arriba y abajo, mientras se aplica el producto.
La entrada y la salida de la cama es con la lanza apuntando a la parte baja.
El movimiento de la lanza se aplica en la parte media del rosal.
El paso del fumigador es lento

El pase doble se aplica con ataques mas severos y hay que tomar en cuenta lo siguiente:

La lanza tiene un movimiento de arriba y abajo, mientras se aplica el producto.
El movimiento de la lanza se aplica en la parte media del rosal primero (paso 1) y luego en la parte alta (los botones)(paso 2).
El paso del fumigador es lento.
La primera entrada y la salida de la cama es con la lanza abajo, y, la segunda entrada y salida es con la lanza alta.

Foto 10. Secuencia del primer paso del paso doble.

Foto 11. Secuencia del segundo paso del paso doble.

Grafico 1. Grafico representativo de un invernadero, aquí se muestra con los colores verdes (correspondiente a los dos fumigadores), la ruta de los fumigadores entre las camas en el paso simple; y la lineas rojas ( correspondiente a los dos fumigadores), representan la ruta de los fumigadores en el paso doble.

2.1.3.2.Botritis

Foto 12. Entrada y salida de los fumigadores en el paso simple

El control de Botritis se lo realiza con un paso simple enfocado al boton, pero, difiere con el anterior que se aplico al oidium en lo siguientes:

La lanza se mantiene estatica en la parte de arriba mientras se aplica el producto.
La entrada y la salida de la cama es con la lanza apuntando a la parte alta y se pasa por alto una cama.
La lanza se aplica en la parte alta (boton).
El paso del fumigador es medio

Grafico 2. Grafico representativo de una parte del invernadero, aquí se muestra con los colores verdes (correspondiente a los dos fumigadores), la ruta de los fumigadores entre las camas en el paso simple, se puede apreciar como difiere del anterior paso simple por el salto de cama que da.

2.1.3.3.Trips

Cuando las apariciones de Trips son esporadicas o nulas, se llevan a cabo fumigaciones de control en el exterior de los invernaderos.

2.1.3.4.Araña

El control de araña se lo realiza con un paso simple enfocado al follaje, parecido al q se aplica en la botritis:

La lanza se mantiene estatica en la parte de media mientras se aplica el producto.
La entrada y la salida de la cama es con la lanza apuntando a la parte media.
La lanza se aplica en la parte media(follaje).
El paso del fumigador va de medio a rapido.

Foto 13. Aplicacion de un producto para araña.

2.1.4. Limpieza del Equipo

Manejo de los productos Fitosanitarios

2009-08-01T18:21:00.005-05:00

1. La Bodega de productos quimicos

La bodega de quimicos es un area cerrada,donde los productos estan clasificados por su grado de toxicidad.

Foto 1. Bodega de quimicos

La persona encargada del despacho de loss insumos, tiene su equipo de proteccion que consta de overol, mascarilla y guantes plasticos.

Foto 2. Equipo de proteccion para el despacho de los quimicos.

Los quimicos estan debidamente protegidos, con barreras fisicas para evitar la contaminacion hacia el exterior, asi podemos encontran que en el piso no desfoques a alcantarillados, los residuos de la dosificacion, es lavado y lugo recogido en un tacho, para luego ser eliminado adecuadamente.

Foto 3. Der.) Tacho con tierra para absorber leves derrames al momento del despacho. Izq.)Tacho para recoger los residuos de las probetas.

2. Despacho de los insumos

El despacho de productos se quimicos se realiza por lotes. La persona encargada del despacho, tiene que estar debidamente equipada, para esto cuenta con:

Mascarilla
Guantes plasticos
Delantal
Balanza gramera
Probetas de distintas medidas
Limpion o franela.

Cuando un envase es abierto, se eliminan etiquetas y sellos para evitar falsificaciones.

Los frascos vacios pueden ser reutilizados, si no es asi, son perforados (para evitar el envase de producto de consumo), y guardados para luego ser entregados al proveedor.

Foto 4. Der.) despacho de productos solidos. Izq.) Despacho de productos liquidos.

FORMULACIONES PARA SOLUCIONES MADRE (Murashige & Skoog 1962)

2009-07-13T19:55:00.000-05:00

Cultivo in Vitro: Preparacion de Soluciones Madre (Murashige&Skoog 1962)

2009-07-07T20:18:00.000-05:00

Las soluciones deben prepararse con mucho cuidado y precision. Las sales deben pesarse en una balanza granataria (prescision= 0.01 g) y en la balanza analitica se pesaran las vitaminas y reguladores de crecimiento (precision = 0.0001 g).

La conservacion de las soluciones madres se hara de 4-5 C. en el refrigerador, es recomendable no prolongar por mas de tres meses la conservacion de las soluciones madres de sales minerales. Las que contengan vitaminas y sustancias de crecimiento estables podran conservarse un maximo de 4 semanas.

1. MACRONUTRIENTES

Se prepara el material de vidrio a utilizar (Erlenmeyer de 1 L., pipetas de varios tamaños), estos deben estar esterilizados, y secos. Se preparan los otros materiales a utilizarse (papel de aluminio cortado, piseta, balanza analítica, reactivos, espátula).

Foto 1. Algunos reactivos en estado puro.

Primeramente se lava el erlenmeyer con agua destilada y se coloca un poco de agua destilada, aproximadamente 100 ml.

Se agrega los reactivos uno a uno, siempre limpiando el papel aluminio con la Piseta, para asegurar que no quede nada pegado en el mismo. Cuando se han agregado todos los reactivos, se enraza con agua destilada hasta completar 1 L. y con un pedazo de papel de aluminio se tapa el erlenmeyer y se procede a mezclar; se puede utilizar un agitador magnetico.

Foto 2. Preparacion de solucion madre de macronutrientes.

2.MICRONUTRIENTES

Se enciende la balanza analítica. Se coloca un cuadrado de papel aluminio y se encera la balanza. Una vez que la balanza esta en “0”, se procede a pesar el reactivo. Cuando se tiene el peso requerido se retira el mismo en el papel aluminio en el cual se peso y se lo reserva, hasta, terminar de pesar todos. Es importante que en los reactivos para la solución de micronutrientes se pese el valor requerido, porque con solo 1 miligramo de mas, o de menos, puede alterar el resultado final. Una vez que se ha terminado de pesar todos, se procede a preparar la solución de micronutrientes.

Cuando se han agregado todos los reactivos, se enraza con agua destilada hasta completar 200 ml. Con un pedazo de papel de aluminio se tapa el erlenmeyer y se procede a mezclar; se puede utilizar un agitador magnetico

3.QUELATO DE HIERRO

Se prepara el material de vidrio a utilizar (Erlenmeyer, agitador, rejilla de asbesto), estos deben estar esterilizados, y secos. Se preparan los otros materiales a utilizarse (papel de aluminio cortado, piseta, balanza analítica, reactivos, espátula).

En un Erlenmeyer se coloca el agua y el EDT y se lo lleva al fuego sobre una rejilla de asbesto. Cuando ha hervido se le adiciona el sulfato de hierro . Cuando vuelve a hervir se retira del fuego se deja enfriar. Se enrraza a 100 ml y se coloca en un envase color Ambar para evitar la degradacion de los componentes.

Foto 3. Der) preparacion de Quelato de hierro antes de colocar el sulfato de hierro. Izq) preparacion de Quelato de hierro despues de colocar el sulfato de hierro, notese el cambio de coloracion.

4.VITAMINAS.

Se prepara el material de vidrio a utilizar (Erlenmeyer de 100 mL., pipetas de varios tamaños), estos deben estar esterilizados, y secos. Se preparan los otros materiales a utilizarse (papel de aluminio cortado, piseta, balanza analítica, reactivos, espátula).

Primeramente se lava el erlenmeyer con agua destilada y se coloca un poco de agua destilada. Se agrega los reactivos uno a uno, siempre limpiando el papel aluminio con la Piseta, para asegurar que no quede nada pegado en el mismo. Cuando se han agregado todos los reactivos, se enraza con agua destilada hasta completar 200 ml. y con un pedazo de papel de aluminio se tapa el erlenmeyer y se procede a mezclar; se puede utilizar un agitador magnetico

5.HORMONAS.

Las Auxinas y Giberelinas se disuelven con alcohol antiséptico (70º)

G3 10MG / ALCOHOL 5ML + AGUA DESTILADA 5 ML
ANA 12 MG / ALCOHOL 3 ML + AGUA DESTILADA 9 ML.
AIA 13 MG / ALCOHOL 5 ML + AGUA DESTILADA 8 ML.

Las Citocininas se disuelven con clorhídrico
BAP 10 MG…..HIDROXIDO 4 ML + AGUA DESTILADA 6 ML

Una vez prepradas las hormonas se las mantiene en congelación y al momento de utilizarlas se las calienta sobre una rejilla de asbesto las que se han congelado.

Monitoreo de Plagas

2009-07-04T20:40:00.000-05:00

El monitoreador, es la persona encargada de realizar el monitoreo de las plagas todos los días; el monitoreo se realiza por las siguientes causas:

para ver la incidencia de una plaga,
para ver si el control se esta dando en el cultivo,
para evaluar el estado de avance de la plaga.

Para el monitoreo se muestrea en el interior del invernadero, escogiendo partes al azar del invernadero, Se empieza en la primera cama coincidiendo con el comienzo de la nave (cada nave tiene 4 camas de lado a lado), y se salta a la ultima cama de la nave.

La forma de buscar plagas y enfermedades depende de esta misma, así, para araña, se busca en las hojas inferiores, en el envés, si la infección de araña es muy severa, se encontrara la misma hasta arriba de la planta. Para trips, se busca en los botones y las flores demasiado maduras, buscando entre los pétalos. La Botritis se busca en los botones. El oídium, se busca en el follaje de medios hacia arriba. El velloso, también se busca en la parte inferior del rosal.

Foto 1. Forma de monitoreos, izq.) Monitoreo de oidium en el follaje, der.) Buscando trips en una flor madura.

En esta floricola, hay 5 grados de severidad para ataque de una plaga o enfermedad, estos van de “0”, que significa ausencia total, hasta “5” que es incontrolable. Si se enuentra en un lugar se marca como “1” (semi-leve), si hay en 2 o 3 puntos del muestreo se marca como “2” (leve), y asi sucesivamente.

Todo lo observado por el monitoreador, se registra en un formulario, en grado de severidad de la plaga, por variedad, dentro de cada bloque; este formulario es entregado al programador para que puede basare en esto y asi poder establecer un control para la plaga que aqueja el cultivo.

Grafico 1. Grafica del invernadero mostrando la ruta de muestreo para el monitoriador, la linea azul es la ruta completa, los otros colores indican la entrada para los dias siguientes, asi, azul es el primer dia, rojo el segundo dia, verde el tercer dia, negro el cuarto dia y el quinto se vuelve a empezar por el azul.

Cuando se encuentran focos considerables durante el monitoreo en el cultivo, estos focos son señalizados con listones de colores, para que así los fumigadores puedan intensificar la aplicación en la zona; los colores son:

Amarillo para Oidium
Rojo para araña
Azul para Trips

Foto 2. A, B y C) Listones de colores en el cultivo, indicando focos.

1.1.Identificación de las principales plagas y enfermedades

1.1.1. Mildeo polvoriento u Oidium

Investigación Vegetal Aplicada, 2001, Dice que la infección por mildeo polvoriento (Sphaeroteca pannosa) puede ocurrir en las rosas de invernadero en cualquier época del año. Inicialmente se observa una masa fungosa, polvorienta y blanca sobre las hojas, principalmente de la parte superior de la planta, formada por hifas (micelio) y esporangios. Cuando la infección es severa el hongo puede observarse también sobre el envés de las hojas, tallos y botones florales. La infección de las hojas jóvenes hace que se mal formen, pues afectan directamente el tejido foliar; en las hojas maduras se desarrollan manchas de color café.

La infección comienza desde el momento en que una espora llega a la superficie de la hoja (o del tallo o flor) luego de lo cual esta debe germinar. Para ello no se requiere agua, ya que la espora contiene un 70 % de humedad; la germinación usualmente tiene lugar durante la noche, cuando la humedad relativa es mas alta que durante el día.

La dispersión ocurre principalmente a través del aire y en menor medida a través de humanos y animales. Es imposible prevenir realmente la infección. Entre las variedades de rosa disponibles se encuentran diferencias de susceptibilidad a la infección por mildeo, de manera que una de las posibilidades es elegir una variedad menos sensible.

Foto 3. Arr.) Oidium atacando a un tallo, Abaj.) Invasión de Oidium en una espina del tallo.

Infoagro.com, 2007, señala que en el Oídio (Sphaerotheca pannosa), los síntomas, manchas blancas y pulverulentas, se manifiestan sobre tejidos tiernos como: brotes, hojas, botón floral y base de las espinas. Las hojas también se deforman apareciendo retorcidas o curvadas.

Foto 4. Oidium en una hoja.

1.1.1. Botrytis

Para Investigación Vegetal Aplicada (2001), la Botritis o moho gris es causada por Botryotinia fuckeliana (syn. Botrytis cinérea) que aparece sobre manchas muertas como una masa fungosa y un tanto polvorienta de color gris pardo, compuesta por micelio y esporangios. En principio, Botrytis puede infectar todas las partes aéreas de la planta. En los cultivos en sustratos, se manifiesta solamente durante la post-cosecha en forma de lesiones sobre las flores. Una infección es suficiente para que toda la flor se pudra por completo.

Foto 5. Botritis al tallo y boton.

Generalmente es un patógeno de plantas débiles, pues estas son infectadas bajo condiciones desfavorables como exceso de humedad relativa, alta densidad de siembra, frio, baja luminosidad, exceso de nitrógeno. En su mayor parte, la infección ocurre en material vegetal en descomposición, a través de heridas (podas, cosecha) o a través de partes muertas de la planta.

Infoagro.com (2007), En el Moho gris o Botrytis (Botrytis cinerea), su desarrollo se ve favorecido por las bajas temperaturas y elevada humedad relativa, dando lugar a la aparición de un crecimiento fúngico gris sobre cualquier zona de crecimiento, flores, etc. Asimismo hay que cuidar las posibles heridas originadas en las operaciones de poda, ya que son fácilmente conquistadas por el patógeno. Para el control de la enfermedad resultan de gran importancia las prácticas preventivas, manteniendo la limpieza del invernadero, ventilación, con la eliminación de plantas o partes enfermas y realizando tratamientos con fungicidas a base de iprodiona y procimidona.

1.1.3. Velloso

Para Infoagro.com (2007), El Mildiu velloso o tizón (Peronospora sparsa) provoca la enfermedad más peligrosa del rosal ya que ocasiona una rápida defoliación, sino se actúa a tiempo puede resultar muy difícil recuperar la planta.

Foto 6. Tallo atacado por el velloso

Se desarrolla favorablemente bajo condiciones de elevada humedad y temperatura, dando lugar a la aparición de manchas irregulares de color marrón o púrpura sobre el haz de las hojas, pecíolos y tallos, en las zonas de crecimiento activo. En el envés de las hojas pueden verse los cuerpos fructíferos del hongo, apareciendo pequeñas áreas grisáceas. Para prevenirlo debe mantenerse una adecuada ventilación en el invernadero. Además debe evitarse películas de agua sobre la planta ya que ésta favorece la germinación de las conidias.

1.1.4. Trips

Para Investigación Vegetal Aplicada (2001), En Holanda ocurren unas 1590 especies de trips (Thysanoptera), siendo las mas frecuentes en los invernaderos el trips occidental de las flores (Frankliniella occidentalis y el trips del tabaco Thrips tabaco).

Los trips se multiplican poniendo huevos en los tejidos vegetales blandos o suculentos. El trips occidental de las flores vive dentro de los botones florales, las yemas y las flores, lo que dificulta su control.

Con sus partes bucales extraen la savia vegetal; las células vacías toman inicialmente una tonalidad plateada, luego esos puntos se tornan cafés a medida que el tejido muere. Algunas especies raspan el tejido. También es frecuente observar los excrementos en forma de puntos negros. En la rosa, los trips causan daño especialmente a los pétalos y sépalos. Las infecciones severas causan daños en las hojas y las proporciones apicales de los brotes.

Según Infoagro.com (2007), los Trips (Frankliniella occidentalis), los trips se introducen en los botones florales cerrados y se desarrollan entre los pétalos y en los ápices de los vástagos. Esto da lugar a deformaciones en las flores que además muestran listas generalmente de color blanco debido a daños en el tejido por la alimentación de los trips. Las hojas se van curvando alrededor de las orugas conforme se van alimentando.

1.1.5. Araña

Para Investigación Vegetal Aplicada (2001), las arañitas pertenecen al grupo de los ácaros y se encuentran relacionadas con las arañas verdaderas. Tienen 8 patas, a diferencia de los insectos que tienen seis. Se alimentan solamente de la savia de las plantas, al perforar y succionar las células. Generalmente se encuentran en la superficie interior de las hojas.

Foto 7. Arr.) Amarillamiento característico en las hojas infectadas con araña. Abaj.Arañas parcialmente controlada en el envés de una hoja.

Las células vacías se tornan amarillas, produciendo manchas foliares. Al aumentar el daño las hojas se vuelven completamente amarillas y se caen. Cuando las producciones llegan a ser altas las telarañas llenas serán notorias; en este punto sin embargo, el problema será muy difícil de solucionar.

La dispersión de las arañas tiene lugar con frecuencia en la ropa de los trabajadores, razón por la cual es muy importante reconocer rápidamente la presencia de estos acaros. Es frecuente que los focos aparezcan siempre en el mismo lugar, de manera que es útil marcarlos y elaborar un plano de cultivo. Las arañitas viven en el envés de las hojas, por lo que las aspersiones deben dirigirse siempre allí.

Para infoagro.com, la araña roja (Tetranychus urticae), es la plaga más grave en el cultivo de rosal ya que la infestación se produce muy rápidamente y puede producir daños considerables antes de que se reconozca. Se desarrolla principalmente cuando las temperaturas son elevadas y la humedad ambiente es baja. Inicialmente las plantas afectadas presentan un punteado o manchas finas blanco-amarillentas en las hojas, posteriormente aparecen telarañas en el envés y finalmente se produce la caída de las hojas.

Foto 8. Arr.) Se pueden apreciar mejor las arañas, observándolas contra la luz, Aba.) Ataque activo de arañas en una hoja.

Foto 9. Araña observada bajoel microscopio

PROCEDIMIENTO DE LABORATORIO PARA EL ANALISIS DE C.E., pH Y NITRATOS EN LOS SUELOS FLORICOLAS (II PARTE).

2009-06-30T10:19:00.000-05:00

1. LECTURA DE C.E., pH Y NITRATOS

Transcurridas las 12 horas, se vierte el extracto en otro recipiente, se encienden los equipos (peachimetro y conductimetro), y se alzan los electrodos.

Se coloca el extracto bajo los electrodos, y se los desciende para que entre en contacto con dicho extracto, se esperan unos segundos para que los equipos se estabilicen y se procede a leer.

El peachimetro indica el valor del pH, el cual se lo regisra en los registros según la variedad y la valvula del cual fue tomada.

El conductimetro indica el valor de C.E.; el valor puede estar expresado en mS/cm, o µS/cm. Si es mS/cm se coloca el valor que registra el conductimetro con 1 decimal. es decir en el ejemplo seria 2.5; pero, si es µS/cm, la unidad del dato que registra el conductimetro se divide para 1000 antes de registrarlo y se coloca igualmente un decimal, entonces seria 1,3.

Para tomar Nitratos se utiliza las tiras del test de nitratos, el procedimiento es introduciendo la tira unos segundos en el extracto, luego se lo retira y se toma la medida. Cuando la cinta ha coloreado, se ubica el color en la escala dada en el envase del test de nitratos, se registra dicho valor.

Una vez que se han tomado los datos, se levantan los electrodos y se limpian los mismos con una pizeta con agua destilada, antes de colocar el nuevo extracto.

Cuando se han tomado todos los datos, se lavan los electrodos y se los deja inmersos en un recipiente con agua destilada.

2. LOS DATOS.

Los datos son colocados en el registro de C.E., pH y NO3. Cuando se termina de obtener todos los datos, se evalúan las muestras, colocando una (x) en las muestras que están por encima o por debajo del rango y un visto cuando estén dentro del rango.

Los rangos varían de una especie a otra, y están marcados en la cabecera de cada casilla y son:

Se suman el total de muestras analizadas, además del número de deméritos de cada categoría (C.E., pH y NO3). Con los datos anteriores, se obtiene la eficiencia, la misma que se obtiene con la siguiente fórmula:

% EFICACIA CE.pH.NO3 = ((N – Dt) x 100) / (N)

Donde:

N: Total de muestras analizadas
Dt: Total de muestras con demerito
100: Constante

Cuando se terminan se sacar todos los porcentajes de eficiencia, se suman los deméritos que se encontraron por debajo del rango y se saca el porcentaje en relación al total de muestras analizadas.

% DEMERITO < rango =" ((Dt">

Donde:

N: Total de muestras analizadas

Dt <: Total de muestras con demerito por debajo del rango.

100: Constante

% DEMERITO > RANGO = ((Dt >) x 100) / (N)

Donde:

N: Total de muestras analizadas
Dt >: Total de muestras con demerito por arriba del rango.
100: Constante

Los datos de C.E., pH y NO3, son colocados en la carpeta de REGISTRO DE C.E., Ph, NO3, y deberán ser firmados por el Jefe de Cultivo de cada área. Al finalizar el mes, se promedian los valores que se obtuvieron en las dos semanas y si este promedio esta por debajo del 60%, se marca en rojo.

Las aplicaciones de fertilizantes en el cultivo de Rosas se las realizaran siempre que la CE, este menor o igual a 1,3 mmhos, en el caso de flores de verano se realizara la aplicación de fertilizante cuando la C.E sea menor o igual a 1 mmhos. En variedades como Gerberas y Minigerberas,se fertilizara siempre que el C E este menor o igual a 2,0, En Gypsophila Perfecta y, Million Star se fertilizara siempre que la CE este menor o igual a 1,8 mmhos .

PROCEDIMIENTO DE LABORATORIO PARA EL ANALISIS DE C.E., pH Y NITRATOS EN LOS SUELOS FLORICOLAS (I PARTE).

2009-05-25T17:08:00.000-05:00

1. DE LA TOMA DE MUESTRAS EN ROSAS.

Para obtener una muestra, hay que recolectar 8 sub-muestras (2 muestras por cama). Las 4 camas son siempre las y están marcadas por una señal de pintura.

Las 4 camas serán la 2da y penúltima de la variedad e igualmente las enfrentadas.

Los sitios de toma en las camas son siempre el 3ro y 6To cuadro en camas de 30 metros, o, el 2do y 4to cuadro en camas de 15 metros.

La sub-muestra se toma en el centro de la cama, exactamente en la mitad entre las dos líneas de mangueras de goteo. En el caso que en la cama se haya colocado compost se remueve el compost del sitio donde se toma la sub-muestra para asegurar que no existe compost en la muestra a analizar.

Se introduce el barreno hasta una profundidad de 20 cms. Los 5 cm superiores se descartan y el resto es colocado en un balde, hasta terminar de recolectar todas las sub-muestras.

Foto 1. y 2. Barrenado de las sub-muestra.

Una vez recolectadas las 8 sub-muestras, se procede a mezclarlas bien en el mismo balde donde se las fue colocando luego de ser recolectadas.

De esta mezcla de tierra se toma aproximadamente media libra, y se procede a colocarla en una funda plástica identificada con el nombre de la valvula y la variedad, para luego ser llevada al laboratorio para su análisis.

Foto 3. Etiqueta de identificacion. Foto 4. Muestras listas para ser procesadas.

Las muestras se toma en un ciclo de dos semanas. Semana par todo lo que es rosas. Los datos serán colocados en el letrero y colocado por valvula a manera de historial en rosas y la toma de muestras se realizara de lunes a martes de lo que esta fertilizado. La misma persona toma todas las muestras.

2. TOMA DE MUESTRAS PARA FLORES DE VERANO

Para obtener una muestra, hay que recolectar varias sub-muestras (muestras por cada variedad que tenga una válvula). Las camas en flores de verano no son siempre las mismas. Las muestras se toman en las camas donde las plantas se encuentran en estado vegetativo y según el programa de fertilización han sido fertilizadas de cada variedad.

Foto 5. Cama fertilizada, señalizada con la bandera.

Las variedades fertilizadas, estarán identificadas por un banderín azul. Los sitios de toma en las camas son siempre El 3ro y 6To cuadro en camas de 30 metros, o, El 2do y 4to cuadro en camas de 15 metros.

Se introduce el barreno hasta una profundidad de 20 cms. Los 5 cm superiores se descartan y el resto es colocado en un balde, hasta terminar de recolectar todas las sub-muestras.

Una vez recolectadas las sub-muestras de las variedades de una válvula, se procede a mezclarlas bien en el mismo balde donde se las fue colocando luego de ser recolectadas. De esta mezcla de tierra se toma aproximadamente media libra, y se procede a colocarla en una funda plástica identificada con el nombre de la válvula y la variedad, para luego ser llevada al laboratorio para su análisis.

Los datos serán colocados en el letrero y colocado por valvula a manera de historial en las variedades perennes, como son: million star, gerberas, hipericum, solidago, limonium, y delphinium.

La toma de muestras se realizara de lunes a martes de lo que esta fertilizado. La misma persona toma toma todas las muestras.

3. DEL PROCEDIMIENTO EN EL LABORATORIO
3.1. PREPARACION DE LAS MUESTRAS

Las muestras de tierra se separan por la zona donde fueron recolectadas. Aun en la funda se mezcla vigorosamente la muestra. Se corta la etiqueta de la muestra. Con la tierra de la muestra se llena por completo el “Envase de Medición”. La tierra en este envase debe ser compactada siempre con la misma presión.

Foto 6. Llenado del envase de medicion con la muestra.

La tierra del envase de medición, se coloca por completo en el frasco de agitación (volumen de aproximadamente 0.75 litros). Después se llena el envase de medición con agua destilada y también se vierte en el frasco de agitación, luego nuevamente se llena el envase de medición con agua destilada y nuevamente se vierte en el frasco de agitación, según señala el “Método Holandés”.

Foto 7. Agitacion de la mezcla obtenida.

Se tapa el frasco de agitación y se lo agita fuertemente con la mano durante 1 minuto. Pasado el minuto, se lo transfiere a otro envase sin tapa y se lo deja reposar ese extracto hasta la mañana del día siguiente.

Foto 8. Colocacion del extracto en el envase de medicion.

Foto 9. Frascos en proceso de sedimentacion del extracto.

Propagacion de Rosas de Corte. Capitulo V: Los Patrones Despues de la Siembra.

2009-05-13T19:47:00.000-05:00

1. El Agobio y Deschuponamiento.

El deschupomiento consiste en quitar los chupones (ramas laterales del tirasavia principal o tira savias secundarios) basales que aparecen en torno al tira savia, esto es para evitar la acumulacion de follaje, ademas de preventivo para problemas fitosanitarios que puedan aparecer. Esta actividad se realiza continuamente mientras el patron o el injerto cuente con el tira savia.

FOTO 1. Patron con varios chupones. FOTO 2. Patrones sin chupones.

FOTO 3. Patron agobiado con chupones ( los chupones tienen una coloracion rojiza).

El agobio consiste en encorvar el tira savia, para que no estorbe en el crecimiento de la variedad, una planta puede estar agobiada indefinidamente, siempre y cuando el tira savia no cause problemas fitosanitarios, el agobio garantiza el mejor crecimiento, engrose y vitalidad de la variedad. El patrón es agobiado antes de ser injertado o cuanto el tira savia alcanza un tamaño de 50 cm.

FOTO 4. Injerto agobiado sin chupones.

FOTO 5. Detalle del punto de agobio

2. Injertación

La Injertación en el campo se da los 15 días, o cuando el tira savia tenga 40 cm. El tipo de Injertación puede ser en parche o en “T”, igualmente que en los bancos, primero se realiza un desespinado.

Para el injerto en T se realiza un corte horizontal y uno vertical (superficialmente, con la navaja formando así una T), esto debe ser debajo del tira savia, aproximadamente a 1 cm.

Se escoge la yema deseada, es decir, sana, sin heridas, y se retira el sobrante de hoja que recubre la yema. Con un corte profundo procurando que la parte superior sea mas larga, se saca la yema con parte del tronco leñoso (corteza y una astilla de troco), se retira la astilla y con ayuda de la navaja se introduce en la T que se hizo en el patrón. Para proteger el injerto se cubre la herida envolviendo con una tira de plástico. Luego de la Injertación se corta la punta del tira savia, esto se llama despunte.

FOTO 6. Mujer colocando el plástico. FOTO 7. Apariencia de cómo debe quedar colocado el plástico.

Para la Injertación en parche se realizan dos cortes unidos, tratando de levantar la corteza y con la parte inferior levantada, Se escoge la yema sana fitosanitariamente, y se retira el sobrante de hoja que recubre la yema. Con un corte profundo se saca la yema con parte del tronco leñoso (corteza y una astilla de troco), se retira la astilla y con ayuda de la navaja se introduce en la parte que quedo sobrepuesta.

FOTO 8. Primer corte del patrón.

FOTO 9. Patrón con la herida de parche hecho.

FOTO 10. Yema lista para injertar. FOTO 11. Yema colocada en el lugar correspondiente.

FOTO 12. Cubierta de la yema con la tira de plástico.

3. Activación de Yemas Dormidas

Hay yemas que no se desarrollan igual que otras y se quedan resagadas, a estas se las llaman yemas dormidas, y su activación gira en torno a el calor, para darle mas calor, se coloca un vaso plástico sobre el injerto de yema dormida de 12 a 15 dias.

FOTO 13. Colocación de vasos plásticos sobre patrones con yemas dormidas.

4.Eliminación del Tira savia

Lo mas conveniente es eliminar el tira savia después de la primera cosecha, pero esto puede realizarse mas tempranamente, esta actividad realizada tempranamente, hace que la planta madure mas rápido, pero, causa un desbalance entre plantas y el crecimiento es muy disparejo y puede que la cosecha demore en realizare

5.Aplicación de Hormonas

A los 15 días de injertado el patrón se aplica una fumigación de hormonas, a partir de esta y durante 8 semanas se continua aplicando, para que se desarrolle mejor y con mas vitalidad.

Propagacion de Rosas de Corte. Capitulo IV: Desarrollo de Plantines

2009-04-11T10:15:00.000-05:00

Si a los 21 días no se trasplanta en el campo se injerta en el banco y el patrón se transforma en plantín

1.Preparativos para la enjertación (Desespinado).

FOTO 1. Patron no apto para injertar.

FOTO 2. Realizando el desespinado en los patrones aptos para injertar.

Antes de injertar, se desespina el patron, esto con el fin de facilitar al injertador el trabajo a realizar y que la cinta se adhiera mejor y la herida no tenga contacto con el agua del riego, pudiendo ocasionar la pudrición de la yema injertada.

Conjuntamente con el desespinado, se realiza una selección de patrones, para esto se eliminas los patrones con el tira savia nacido desde abajo.

2.La Injertación

El injerto que se realiza puede ser en “T” o en parche. Para el injerto en T se realiza un corte horizontal y uno vertical (superficialmente, con la navaja formando así una T), esto debe ser debajo del tira savia, aproximadamente a 1 cm.

Se escoge la yema deseada, es decir, sana, sin heridas, y se retira el sobrante de hoja que recubre la yema. Con un corte profundo procurando que la parte superior sea mas larga, se saca la yema con parte del tronco leñoso (corteza y una astilla de troco), se retira la astilla y con ayuda de la navaja se introduce en la T que se hizo en el patrón.

FOTO 3. Yema lista para injertar (vista frontal). FOTO 4. Yema lista para injertar (vista dorsal). FOTO 5. Plantin injertado. FOTO 6. Detalle del encintado.

Para proteger el injerto se cubre la herida envolviendo con una tira de plástico. Luego de la injertacion se corta la punta del tira savia, esto se llama despunte.

3. Actividades Diarias.

3.1. Sacado de cintas.

A los 22 días de injertado, se sacan las cintas plásticas que envuelven a la yema, se realiza con una navaja un corte en la cinta para evitar el estropeo del plantín

3.2. Decapitación.

Es el corte del tira savia en el plantín, desde ahora solo contara con la yema para realizar su asimilación de alimentos.

FOTO 7. Plantin decapitado.

3.3. Pasteo

Luego de la decapitación hay que sellar la herid con una pasta echa a base de captan, para evitar la entrada de la Botritis. También existe un producto llamado Babistin que podría reemplazar al preparado por el captan.

FOTO 8. Realizando pasteo en plantines

Propagación de Rosas de Corte. Capitulo III: Preparacion de Yemas.

2009-04-05T10:41:00.000-05:00

1. Se selecciona los pinch del cultivo para elaborar yemas, se eliminan las yemas florares y se escogen las yemas completas para la enjertación.

2. Se cortan las hojas y las espinas con la tijera, para evitar el estropeamiento de la yema en el transporte y manipuleo. Se las agrupa por tamaño y se hacen paquetes de 25 estacas, cada estaca contiene aproximadamente 7,5 yemas para enjertación.

3. Luego se las hidratan en tanques con agua pura por 24 horas. El agua tiene que tener un pH de 5,5, es decir acido, para el agua fluya en el interior, debido que la savia de la rosa es acida.

El destino de estas yemas, puede ser la venta o el uso propio en el cultivo. Si las yemas no son de uso inmediato, se las almacena en cajas de cartón en el cuarto frio.

Este procedimiento se da para preservar estacas y yemas. Las cajas son preparadas de la siguiente forma:

· Una capa de plástico,
· dos capas de papel,
· las estacas

Luego se cierra y sella; en el lateral se coloca la descripción del contenido. Aquí consta la descripción del contenido, si es patrón será BS. (base) y el código (Natal Brier es 20-02), y si son yemas será VAR. (Variedad) y el nombre de la variedad, la cantidad, el calibre, la fecha de empaquetado, la procedencia (cusubamba, # de cama, Bloque, etc).

Propagación de Rosas de Corte. Capitulo II: Desarrollo de patrones

2009-03-29T16:17:00.000-05:00

Desde el momento en que se siembra la estaca hasta el momento de la siembra, se realizan varias actividades diarias para asegurar la supervivencia del patron:

1. Duchas.

Se empiezan con 4 riegos diarios, dependiendo de lo seco y caliente que este el clima.

Cuando se fumiga, la fumigación, reemplaza uno de los riegos. Con el pasar de las semanas se va disminuyendo un riego hasta mantenerse con 2 riegos diarios.

Foto 1. Joven aplicando riego a un banco

2. Fumigaciones.

La fumigación se basa en controlar principalmente Botritis, velloso (este ultimo es muy explosivo en la época húmeda), y, los afidos (pulgones que aparecen como consecuencia de la aplicación de melaza).

En la aplicación se acompaña con un anti estrés que puede ser melaza o “Ángel”. La fumigación siempre se debe realizar en horas de la mañana. La presión de la bomba es de 30 a 40 libras.

Foto 2. Fumigacion a un banco

3. Drench.

Es como una especie de ducha, pero más fina, la intención con el Drench es que el producto baje hasta la base de la planta en esta forma se adiciona a los patrones varios productos como estimuladores de raíz, promotores de follaje y correcciones de hierro (para corregir la tonalidad verde amarillento en el follaje). Las correcciones de hiero se realizan en horas de la mañana par evitar que la planta se marchite. La presión debe ser de 15 a 20 libras.

Foto 4. Drenchado a un banco.

4. Castración.

Foto 5. Banco listo para ser castrado

También llamada selección consiste en escoger la mejor tira savia ( la yema activada mas arriba posible), y eliminar las restantes. Esta labor se realiza con una navaja bien filosa y esterilizada (formol), con un solo corte raso.

Foto 6 y 7. Patrones antes de ser castrados

A partir de ahora el patrón solo contara para la alimentación con esta tira savia.

Foto 8. Castracion

5. Adición de Bacterias

En forma de drench, se adicionan tres productos biologicos, Humin, Trichoderma y bacillus, esto en la semana que se entregan los patrones, con el fin de que creen defensas para su desarrollo en el cultivo.

6. Entrega y Siembra de Patrones

Se escogen los patrones listos para la siembra y se da prioridad a los patrones con tira savia más largos.

Foto 9 y 10. Pre-siembra.

Se colocan en gavetas plásticas en razón de 7x5 vasos, es decir 35 plantas por gaveta, procurando que el tira savia no roce la pared de la gaveta.

Las gavetas son transportadas en un furgón hasta el sitio de la siembra, lo mas pronto posible, cuando se termina el engavetado, se reagrupa el material vegetal sobrante para darle más tiempo que se desarrolle y se lleva un conteo de rezagados, estos tendrán de una a dos semanas mas para desarrollarse.

Foto 11 y 12. Durante la siembra.

La Siembra se da en 3 bolillos, los vasos deben ser bien humedecidos antes del Transplanté (para facilitar la salida del sustrato y evitar que las raíces se rompan), al igual que las camas, se realiza un orificio con la mano y se coloca el contenido del vaso cuidadosamente, sin asentar mucho, porque, las raíces se pueden romper; el tira savia o el injerto, debe quedar a la altura de la guía que se coloca como orientación para las plantadoras.

Foto 13. Siembra.

Foto 14. Forma de plantar.

Cronograma de Actividades

Propagación de Rosas de Corte. Capitulo I: Preparacion del patron

2009-03-28T17:07:00.000-05:00

1. Preparación

1.1. Corte, Deshoje, selección e hidratación de los patrones

Foto 1. Tallos cortados de Natal Brier, listos para el deshoje.

Foto 2. Tallos deshojados en tanques de hidratación.

Los basales llegan a medir hasta 2 m., se desechan los 60 cm. De punta y se cosecha el restante. Cuando se cosecha la patronera, lo primero que se hace es deshojarlas manualmente y paralelamente desechar los tallos muy delgados y estropeados. Los tallos seleccionados son hidratados verticalmente en gavetas con agua pura por 24 horas.

1.2. Elaboración de las estacas.

Se cortan las puntas de los tallos y luego se cortan las estacas de 15 cm. Cada una, para posteriormente seleccionar por calibre, pudiendo ser gruesas, medianas o delgadas.

Luego se las desinfectan en tanques con captan en proporción de 1 gr. Por litro en donde permanecen por 24 horas. Para evitar la evaporación del captan se cubren las gavetas con papel.

Foto 3. Corte y calibrada de estacas. Foto 4. Gavetas con estacas sumergidas en captan y protegidas con un papel, para evitar la evaporación. Foto5. Estacas impregnadas con captan por efecto de la inmersión.

1.3.Preparación del sustrato.

Primero se prepara el banco de propagación, mojando la base y aplanándola. El sustrato es una mezcla de Cascajo, compost y tamo de arroz en proporciones 2-1-0,5. El cascajo es cernido con una red plástica para evitar el grano más tosco y mezclado con palas. La mezcla se coloca en vasos plásticos de 10 onz. y se ubica en los bancos de propagación; una persona puede llenar 300 vasos por hora. Se desinfecta con Vitavax en proporción de 5gr./L y es adicionado en forma de ducha cuando el banco esta lleno de vasos.

Así Para un banco de 6500 vasos se requerirán 100 L. de agua y 500 gr. de Vitaban.

Este sustrato es colocado en vasos plásticos y organizados en hileras de 16 vasos a lo ancho de la nave.

Foto 6. Llenado de vasos con sustrato. Foto 7. Llenado del banco con las vasos. Foto 8. Desinfeccion del banco con Vitavax.

1.4. Siembra de Estacas.

La siembra de las estacas se realiza impregnado la estaca de un hormona enrraizante llamada agrom 1, cuyo ingrediete activo es Alfanaftalennacetico al 4 %.

Luego es introducida en los vasos con sustrato. Para finalizar se los riega con una ducha de huecos pequeños (1000 huecos).

Cada banco tiene su distintivo, en el cual, consta el nombre de la variedad, la cantidad, la fecha de siembra, el numero del banco.

El patrón enraíza de 6 a 8 semanas después de la siembra en vasos.

Se hace una relación del tamaño de la raíz con el tamaño del tira savia. A los 21 días ya es un patrón propiamente dicho.

Foto 9. Siembra de estacas. Foto 10. Banco terminado e identificado.